Ризогенез експлантів Сercis siliquastrum L. ‘Albida’ in vitro

Лариса Колдар

Abstract


Досліджували ризогенез in vitro у експлантів Сercis siliquastrum ‘Albida’ — рідкісного в Україні внутрішньовидового таксона, в якого на відміну від основного виду, рослини утворюють квітки білого забарвлення. Розмноження
даної декоративної форми можливе лише за використання вегетативного розмноження, в тім числі in vitro, коли впродовж усього періоду культивування експлантів відбувається ріст, розвиток та відновлення життєвої форми рослини, у формуванні якої важливу роль відіграють фітогормони. Приведено результати досліджень залежності ризогенезу експлантів від вмісту у живильному середовищі Мурасіге і Скуга фітогормонів. Процеси коренеутворення у рослин, розмножуваних in vitro, залежали від концентрацій фітогормонів та їх співвідношень у живильних
середовищах. За культивування експлантів С. siliquastrum ‘Albіda’ на живильних середовищах протягом 10–12 діб у базальній частині експланта спостерігали утворення калюсної маси, з якої в наступні 14–18 діб з’являлися зачатки коренів і впродовж наступних 10–12 діб вони досягали 4,0–6,0 см завдовжки. Одночасно у експлантів формувались мікропагони, кожен з яких впродовж 25–38 діб досягав 4,0–6,0 см, із сформованим центральним стеблом та трьома-чотирма парами добре розвинених листків. Використання фітогормонів b-ІОК і a-НОК у концентраціях 0,1–1,0 мг/л сприяло збільшенню кількості рослин-регенерантів до 32,5–64,2%. Додавання до живильного середовища a-НОК — 0,5 мг/л та b-ІОК — 0,1 мг/л стимулювало утворення 64,2% укорінених рослин.


Full Text:

PDF

References


Butenko, R. G. (1964). Kul’tura izolirovannykh tkanei i fiziologiia morfogeneza rastenii. Moskva: Nauka, 1964. 272 s. (in Russian).

Cherevchenko, T. M. & Kushnir, G. P.(1986). Orchids in culture. Kiev Naukova Dumka. 200 p. (in Russian).

Davis, C. C., Fritsch, P. W., Li, J., & Donoghue, M. J. (2002). Phylogeny and biogeography of Cercis (Fabaceae): evidence from nuclear ribosomal ITS and chloroplast ndhF sequence data. Systematic Botany. Р. 289–302.

Gamburg, K. Z., Leonova, L. A., & Rekoslavskaia, N. I. (1978).

Metabolizm auksinov i rost kul’tur rastitel’nykh

tkanei. Kul’tura kletok rastenii. Kiev: Naukova dumka. S. 47–52. (in Russian).

Iudintseva, E. V. (1977). Kornesobstvennye rozy. Introduktsiia i priemy kul’tury tsvetochno-dekorativnykh rastenii. S. 140–149. (in Russian).

Jain, S. M., & Ishii, K. (Eds.). (2014). Micropropagation of woody trees and fruits. Forestry Sciences. (Vol. 75). Springer Netherlands. 840 p.

Kalinin, F. L. (1951). Tekhnologiia mikroklonal’nogo razmnozheniia rastenii. Kiev: Naukova dumka. 232 s. (in Russian).

Kataeva, N. V. & Butenko, R. G. (1983). Klonal’noe mikrorazmnozhenie rastenii. Moskva: Nauka. 96 s. (in Russian).

Kefeli, V. Iu. (1966). Novye dannye ob endogennoi reguliatsii rosta rastenii. Agrokhimiia. № 7. S. 127–139. (in Russian).

Koldar, L. A. (2006). Introduktsiia vydiv rodu Cercis L. u Pravoberezhnyi Lisostep Ukrainy ta perspektyvy vykorystannia yikh u zelenomu budivnytstvi. Uman: UVPP, 158 s. (in Ukrainian).

Koldar, L. A. (2008). Features of ontogeny of Cercis siliquastrum L. plants in vitro culture. Autochthonous and alien plants. № 3–4. Р. 53–57. (in Ukrainian).

Kunakh, V. A. (2005) Biotechnology of medicinal plants. Genetic, physiological and biochemical basis. Kyiv: Lohos. 730 p. (in Ukrainian).

LPWG (The Legume Phylogeny Working Group). (2017). A new subfamily classification of the Leguminosae based on a taxonomically comprehensive phylogeny. Taxon 66 (1). P. 44–57. DOI: 10.12705/661.3

Mitrofanova, I. V. (2011). Somaticheskii embriogenez i organogenez kak osnova biotekhnologii polucheniia i sokhraneniia mnogoletnikh sadovykh kul’tur. Kiev: Agrarna nauka. 344 s. (in Russian).

Murashige, T. М. & Skoog, F. K. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue culture. Physiol. Plant. 1962. Vol. 15. Р. 473–497.

Podvigina, O. A., Znamenskaia, V. V. & Frolova, V. V. (2001). Induktsiia rizogeneza u sakharnoi svekly v kul’ture in vitro. Materialy VI mezhdunarodnoi konferentsii «Reguliatory rosta v razvitii rastenii v biotekhnologii». Moskva: Izd-vo MSKhA. S. 160. (in Russian).

Rugini, E., Cristofori, V. & Silvestri, C. (2016). Genetic improvement of olive (Olea europaea L.) by conventional and in vitro biotechnology methods. Biotechnology advances. Vol. 34. № 5 Р. 687–696.

Skoog, F. К. & Miller, C. O. (1957). Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissue cultures in vitro. 11th Symposia of the Society for Experimental Biology. Vol. 2. P. 118–131.


Refbacks

  • There are currently no refbacks.