Ризогенез експлантів Сercis siliquastrum L. ‘Albida’ in vitro
DOI:
https://doi.org/10.37555/.13.2017.173259Abstract
Досліджували ризогенез in vitro у експлантів Сercis siliquastrum ‘Albida’ — рідкісного в Україні внутрішньовидового таксона, в якого на відміну від основного виду, рослини утворюють квітки білого забарвлення. Розмноження
даної декоративної форми можливе лише за використання вегетативного розмноження, в тім числі in vitro, коли впродовж усього періоду культивування експлантів відбувається ріст, розвиток та відновлення життєвої форми рослини, у формуванні якої важливу роль відіграють фітогормони. Приведено результати досліджень залежності ризогенезу експлантів від вмісту у живильному середовищі Мурасіге і Скуга фітогормонів. Процеси коренеутворення у рослин, розмножуваних in vitro, залежали від концентрацій фітогормонів та їх співвідношень у живильних
середовищах. За культивування експлантів С. siliquastrum ‘Albіda’ на живильних середовищах протягом 10–12 діб у базальній частині експланта спостерігали утворення калюсної маси, з якої в наступні 14–18 діб з’являлися зачатки коренів і впродовж наступних 10–12 діб вони досягали 4,0–6,0 см завдовжки. Одночасно у експлантів формувались мікропагони, кожен з яких впродовж 25–38 діб досягав 4,0–6,0 см, із сформованим центральним стеблом та трьома-чотирма парами добре розвинених листків. Використання фітогормонів b-ІОК і a-НОК у концентраціях 0,1–1,0 мг/л сприяло збільшенню кількості рослин-регенерантів до 32,5–64,2%. Додавання до живильного середовища a-НОК — 0,5 мг/л та b-ІОК — 0,1 мг/л стимулювало утворення 64,2% укорінених рослин.
References
Butenko, R. G. (1964). Kul’tura izolirovannykh tkanei i fiziologiia morfogeneza rastenii. Moskva: Nauka, 1964. 272 s. (in Russian).
Cherevchenko, T. M. & Kushnir, G. P.(1986). Orchids in culture. Kiev Naukova Dumka. 200 p. (in Russian).
Davis, C. C., Fritsch, P. W., Li, J., & Donoghue, M. J. (2002). Phylogeny and biogeography of Cercis (Fabaceae): evidence from nuclear ribosomal ITS and chloroplast ndhF sequence data. Systematic Botany. Р. 289–302.
Gamburg, K. Z., Leonova, L. A., & Rekoslavskaia, N. I. (1978).
Metabolizm auksinov i rost kul’tur rastitel’nykh
tkanei. Kul’tura kletok rastenii. Kiev: Naukova dumka. S. 47–52. (in Russian).
Iudintseva, E. V. (1977). Kornesobstvennye rozy. Introduktsiia i priemy kul’tury tsvetochno-dekorativnykh rastenii. S. 140–149. (in Russian).
Jain, S. M., & Ishii, K. (Eds.). (2014). Micropropagation of woody trees and fruits. Forestry Sciences. (Vol. 75). Springer Netherlands. 840 p.
Kalinin, F. L. (1951). Tekhnologiia mikroklonal’nogo razmnozheniia rastenii. Kiev: Naukova dumka. 232 s. (in Russian).
Kataeva, N. V. & Butenko, R. G. (1983). Klonal’noe mikrorazmnozhenie rastenii. Moskva: Nauka. 96 s. (in Russian).
Kefeli, V. Iu. (1966). Novye dannye ob endogennoi reguliatsii rosta rastenii. Agrokhimiia. № 7. S. 127–139. (in Russian).
Koldar, L. A. (2006). Introduktsiia vydiv rodu Cercis L. u Pravoberezhnyi Lisostep Ukrainy ta perspektyvy vykorystannia yikh u zelenomu budivnytstvi. Uman: UVPP, 158 s. (in Ukrainian).
Koldar, L. A. (2008). Features of ontogeny of Cercis siliquastrum L. plants in vitro culture. Autochthonous and alien plants. № 3–4. Р. 53–57. (in Ukrainian).
Kunakh, V. A. (2005) Biotechnology of medicinal plants. Genetic, physiological and biochemical basis. Kyiv: Lohos. 730 p. (in Ukrainian).
LPWG (The Legume Phylogeny Working Group). (2017). A new subfamily classification of the Leguminosae based on a taxonomically comprehensive phylogeny. Taxon 66 (1). P. 44–57. DOI: 10.12705/661.3
Mitrofanova, I. V. (2011). Somaticheskii embriogenez i organogenez kak osnova biotekhnologii polucheniia i sokhraneniia mnogoletnikh sadovykh kul’tur. Kiev: Agrarna nauka. 344 s. (in Russian).
Murashige, T. М. & Skoog, F. K. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue culture. Physiol. Plant. 1962. Vol. 15. Р. 473–497.
Podvigina, O. A., Znamenskaia, V. V. & Frolova, V. V. (2001). Induktsiia rizogeneza u sakharnoi svekly v kul’ture in vitro. Materialy VI mezhdunarodnoi konferentsii «Reguliatory rosta v razvitii rastenii v biotekhnologii». Moskva: Izd-vo MSKhA. S. 160. (in Russian).
Rugini, E., Cristofori, V. & Silvestri, C. (2016). Genetic improvement of olive (Olea europaea L.) by conventional and in vitro biotechnology methods. Biotechnology advances. Vol. 34. № 5 Р. 687–696.
Skoog, F. К. & Miller, C. O. (1957). Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissue cultures in vitro. 11th Symposia of the Society for Experimental Biology. Vol. 2. P. 118–131.
Downloads
How to Cite
Issue
Section
License
Copyright (c) 2019 Лариса Колдар
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
The names and email addresses entered in this journal site will be used exclusively for the stated purposes of this journal and will not be made available for any other purpose or to any other party.
Responsibility for technical content and for protection of proprietary material rests solely with the author(s) and their organizations and is not the responsibility of the publisher, journal or its Editorial Staff.
The main author is responsible for ensuring that the article has been seen and approved by all the other authors.
It is the responsibility of the author to obtain all necessary copyright release permissions for the use of any copyrighted materials in the manuscript prior to the submission.
